Ascophyllum Nodosum seaweed extract as an alternative for control of post-harvest soft rot in strawberries / Extrato de alga marinha de Ascophyllum Nodosum como alternativa para controle da podridão mole pós-colheita em morangos

Karoline Dias Paiva, Fernanda Ananias Martins, Tamiris Aparecida dos Santos, Dalilla Carvalho Rezende, Brígida Monteiro Vilas Boas, Déborah Magalhães Xavier-Mis

Abstract


Strawberry post-harvest losses caused by Rhizopus stolonifer (RS) is one of the main problems affecting strawberry production in Brazil. The objective of this study was to evaluate the potential of a commercial product based on Ascophyllum nodosum (AN) seaweed extract in the inhibition of the pathogen growth and disease development in strawberries.  The commercial product was tested in vitro to evaluate the influence of the seaweed extract on the mycelial growth of the pathogen. Potato-dextrose-agar (PDA) medium received different concentrations of the seaweed extract. After 24h, a disk of RS was transferred to the PDA plates containing seaweed extract. Organic strawberries were immersed for 5 minutes in a solution of the AN seaweed extract in the concentration of 40 mL.L-1.  After 24h the strawberries were inoculated by mycelial disk and incubated for 72h at 25o C. The fruits were then evaluated for disease incidence. The commercial product reduced fungal growth at the 5 mL.L-1 concentration and completely inhibited fungal incidence at 40 mL.L-. The A. nodosum seaweed extract at 40 mL L-1 was able to reduce 22.3% of soft rot incidence of strawberries in post-harvest in fruits inoculated by mycelial disks of the phytopathogen without change in humidity and at 25ºC. The results of this study suggest that AN has a potential to be used in the management of soft rot and increase the shelf life of strawberries in post-harvest.

 


Keywords


Biofertilizer; sustainability; phytopathology; food safety; biostimulant.

References


Instituto Brasileiro de Frutas (IBRAF). Acessed in 02 ago. 2015; Available from: http://www.ibraf.org.br/.

Fischer IH, Arruda MC, Almeida AM, Garcia MJ, Jeronimo EM, Pinotti RN, Bertani RM. Doenças e características físicas e químicas pós-colheita em maracujá amarelo de cultivo convencional e orgânico no centro oeste paulista. Rev. Bras. Frutic. 2007; 29(2):254-9.

Galli JA, Fischer IH, Palharini MD. Doenças pré e pós-colheita em variedades de manga cultivadas em sistema orgânico. Rev. Bras. Frutic., 2012; 34(3):734-43.

Henz GP, Reis A, Silva KC, Pereira SF. Incidência de doenças de pós-colheita em frutos de morango produzidos no Distrito Federal. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento. 2008;45.

Pearson RC, Goheen AC. Compendium of grape diseases. Aps Press; 1990.

Food Agriculture Organization (FAO). Perdas e desperdícios de alimentos na América Latina e no Caribe. 2014. Acessed in 18 jun. 2019. Available from: http://www.fao.org/americas/noticias/ver/pt/c/239394/.

Food Agriculture Organization (FAO). FAO: 30% de toda a comida produzida no mundo vai parar no lixo.2017. Acessed in 18 jun. 2019. Available from: https://nacoesunidas.org/fao-30-de-toda-a-comida-produzida-no-mundo-vai-parar-no-lixo/.

Dias, MSC. Cultivo de morango orgânico é alternativa para agricultores familiares da região central de Minas. EPAMIG, MG. 2011. Acessed in 24 mai. 2017. Available from: http://www.epamig.br/index.php?option=com_content &task=view&id=1346&Itemid=68.

Agrios GN. Introduction to plant pathology. Elsevier Academic Press Publication. 2005; 922:23-37.

Amorim L, Rezende JA, Bergamin Filho A, Camargo LE. Manual de fitopatologia. Editora UFV. 2016.

Beninca, CP; Franzener, G; Assil, L; Costa, M.A; Nogueira, J. R. Indução de fitoalexinas e atividade de peroxidases em sorgo e soja tratados com extratos de Basidiocarpos de Pycnoporus Sanguineus. Arq. Inst. Biol., 2008; 75(3): 285-292.

Carvalho, MEA; Castro, PRC. Extratos de algas e suas aplicações na agricultura. Piracicaba: Divisão de Biblioteca (DIBD) da Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz” (ESALQ/USP), Série Produtor Rural. 2014; 56.

Ferreira DF. Sisvar: um guia dos seus procedimentos de comparações múltiplas Bootstrap. Ciênc. agrotec. 2014;38(2):109-12.

Minolta. Precise color communication: color control from perception to instrumentation. Sakai, 1998.

Instituto Adolfo Lutz. Métodos físico-químicos para análise de alimentos. 4. ed. [1ª ed. digital]. São Paulo: Instituto Adolfo Lutz; 2008. 1020 p; Access in: 07 jan. 2020; Available in: http://www.ial.sp.gov.br.

Silva, T. P. Características Produtivas e Físico-Químicas de Frutos de Morangueiro Orgânico Cultivado com o uso de Extrato de Algas. 2011. Acessed in 24 mai. 2017. Available from: http://acervodigital.ufpr.br/bitstream/handle/1884/26514/DISSERTACAO%20THATHIANY%20PORTO%20%20VERSAO%20FINAL.pdf?sequence=1&isAllowed=y.

Peres JC, Carvalho LR, Gonçalez E, Berian LO, Felicio JD. Evaluation of antifungal activity of seaweed extracts. Ciênc. agrotec. 2012; 36(3):294-9.

Coşoveanu AREEA, Axine O, Iacomi B. Antifungal activity of macroalgae extracts. UASVM Bucharest, 2010; 3, 442-447.

Jiménez-Escrig A, Gómez-Ordóñez E, Rupérez P. Seaweed as a source of novel nutraceuticals: sulfated polysaccharides and peptides. InAdvances in food and nutrition research. Academic Press. 2011; 1(64):325-337.

Ambika S, Sujatha K. Comparative studies on brown, red and green alga seaweed extracts for their antifungal activity against Fusarium oxysporum f. sp. udum in Pigeon pea var. CO (Rg) 7 (Cajanus cajan (L.) Mills.). JBiopest. 2014; 7(2):167.

Ambika S, Sujatha K. Antifungal activity of aqueous and ethanol extracts of seaweeds against sugarcane red rot pathogen (Colletotrichum falcatum). Sci. Res. Essay;. 2015;30;10(6):232-5.

Oliari IC, Barcelos RA, Fedrigo K, Garcia C, Marchi T, Botelho RV. Extrato de alga no controle in vitro de Monilinia fructicola. ABA-Agroecologia. 2014; 21(1):9.

Fernandes, AKC.; Cruz, CDF.; Formiga, LDAS. Análise do crescimento de fungos no fruto do tomate (Solanum lycopersicum; solanaceae). Anais da VI Jornada multidisciplinar de Biologia e Saúde e IX Mostra Científica do CESC-UEMA, 2017. v. 1. Acessed in 18 jun. 2019. Available from: https://even3.blob.core.windows.net/anais/67533.pdf.

Rezende DC. Efeito de compostos orgânicos voláteis identificados a partir de Saccharomyces cerevisiae sobre Colletotrichum gloeosporioides e Colletotrichum acutatum e no controle da antracnose em goiaba (Doctoral dissertation, Universidade de São Paulo). 2010.

Silva, J F et al. Otimização da aplicação de um bio-estimulante para o aumento da produtividade e qualidade do morango. Actas Portuguesas de Horticultura. 2014; 1 (23): 380-388.

Musa CI. Caracterização físico-química de morangos de diferentes cultivares em sistemas de cultivo distintos no município de Bom Princípio/RS. 2016. Acessed in 23 jan. 2018. Availablefrom:https://www.univates.br/bdu/bitstream/10737/1594/1/2016CristianeInesMusa.pdf.




DOI: https://doi.org/10.34117/bjdv6n3-279

Refbacks

  • There are currently no refbacks.